骨骼肌是一種橫紋肌，通常是通過肌腱固定到骨骼上，其伸縮可以帶動骨骼的移動，促進機體運動。

    肌細胞呈纖維狀，不分支，有明顯橫紋，核很多，且都位于細胞膜下方。肌細胞內有許多沿細胞長軸平行排列的細絲狀肌原纖維，每一肌原纖維都有相間排列的粗肌絲及細肌絲。肌纖維收縮并不是肌纖維中肌絲本身的縮短或卷曲，而是細肌絲在粗肌絲之間滑行的結果，肌絲滑行使肌節長度縮短，肌原纖維縮短表現為肌纖維收縮。

一、實驗前準備

實驗開始前，將眼科剪刀、眼科鑷子、培養皿，15ml 離心管、移液管、移液槍、槍頭等放入無菌超凈工作臺，以紫外線照射 30min。

按照含 0.2%的 XI 膠原酶、0.2%的中性蛋白酶、0.1%的膠原酶進行配制消化液，用0.22微米的 PES 微孔濾膜進行過濾除菌，置于 50 毫升離心管中，可直接用于組織消化。瓶口消毒后室溫待用。

取出無菌培養皿，分別作好標記，吸取適量 PBS 置于相應標記的培養皿中。

無菌條件下，準備好各種大小的眼科剪刀、止血鉗、眼科鑷子和手術刀。將斷頸處死后浸泡于體積分數為 75%乙醇的SD 大鼠仰臥在超凈臺內的干凈培養皿上。

二、骨骼肌提取

眼科剪刀剪開大鼠后肢皮膚，暴露腿部肌肉，用手術刀小心割取后肢大腿肌肉，同樣方法分離另一后肢大腿肌肉。小心剪取表面無附著膜和脂肪組織的肌肉，置于裝有 PBS 的無菌培養皿中。

吸取適量消化液于相應標記的培養皿中。

將剪取的骨骼肌在無菌 PBS 浸泡清洗，去除脂肪組織后放置于含消化液的培養皿中，采用眼科剪刀剪碎骨骼肌組織，成 1 平方毫米不規則碎片。

輕輕搖勻，室溫靜置消化 30 分鐘

收集組織懸液于 50 毫升離心管中，用消化液反復沖洗培養皿，直至將全部組織塊收集到離心管內。

輕輕吹打混勻組織塊懸浮液.

配平離心：使用低速離心機每分鐘 1000 轉，室溫離心十分鐘。

三、骨骼肌懸液制備及培養

離心后小心去除上清，不要吸到底部的組織塊沉淀，用含 20%胎牛血清的 DMEM 培養基重懸，輕輕吹打混勻，制成懸液。

均勻轉移至六孔板中，輕輕搖勻，標記時間后放于 37 ℃、體積分數為 5%的CO2 飽和濕度培養箱中培養。

本次實驗采用差速貼壁法去除成纖維細胞,37 ℃培養 1 小時 后，吸取上清液置于另一孔中繼續培養。

每隔一小時轉移一次，轉移 3-4 次。4 天后換液, 以后每天換液 1 次，直到增殖達到融合。

四、細胞觀察及鑒定

差速培養后，細胞 24 小時后開始貼壁,96 小時后貼壁，倒置顯微鏡下每天觀察細胞生長及形態特征，傳代培養純化至 P3 代用于后續試驗。

采用 HE 染色和a-actin 染色進行骨骼肌細胞鑒定。

結果表明：本實驗所用的消化液以及差速貼壁法可分離培養出純度高、活力旺盛的骨骼肌細胞。

五、注意事項

1、消化液的制備及消化時間

合適的消化液以及消化時間的把握, 是實驗取材的關鍵：

合適的消化液利于骨骼肌細胞從基膜中釋放出來。

酶作用時間不足則獲得細胞較少,作用時間過長則可致細胞受損、生長狀態不佳。

2、肌肉組織要盡可能剔除表面的膜和脂肪組織：

肌肉組織表明的膜和脂肪組織去除利于后續細胞的純化，減少傳代次數，獲得純度高的骨骼肌細胞。

3、纖維細胞的去除 :

本實驗采用差速貼壁法去除成纖維細胞,37 ℃培養 1 小時后移至另一孔進行培養。

轉移兩次，有效去除骨骼肌細胞中的成纖維細胞。

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